O CeNT

Celem Centrum Nowych Technologii Uniwersytetu Warszawskiego jest stworzenie środowiska otwartego na nowe pomysły i idee umożliwiającego rozwój i kształcenie liderów nauki i gospodarki.

Praca laboratoriów wchodzących w skład naszej jednostki opiera się na realizacji interdyscyplinarnych badań naukowych z pogranicza biologii, chemii, fizyki i technologii informacyjnych.

Centrum Nowych Technologii UW prowadzi także działalność dydaktyczną przez ogranizację cyklicznie odbywających się seminariów, wygłaszanych przez naukowców CeNT UW oraz ich gości. Z listą prelegentów i tytułami ich wystąpień można się zapoznać tutaj.

Projekty prowadzone w CeNT UW realizowane są w obrębie następujących dziedzin:

  • biologia molekularna o szczególnym znaczeniu dla medycyny i środowiska
  • badania strukturalne  – analiza struktur związków chemicznych i materiałów
  • synteza i tworzenie nowych materiałów – materiały funkcjonalne, nanomateriały i biomateriały
  • ekologia i ewolucja – analiza zmian ewolucyjnych i środowiskowych względem gradientu urbanizacji
  • fizyka i jej zastosowania dla potrzeb nowoczesnej techniki i technologii
  • nauki obliczeniowe – doskonalenie funkcjonalności i nowe zastosowania

Zachęcamy do odwiedzania zakładki Kariera, w której regularnie aktualizujemy informacje o obecnie prowadzonych rekrutacjach, zarówno na stanowiska naukowe jak i administracyjne.

O aktywnościach realizowanych w CeNT UW w 2017 roku można znaleźć więcej szczegółów w Sprawozdaniu rocznym Dyrektora CeNT UW za rok 2017, do którego lektury serdecznie zapraszamy.

Rada CeNT UW – Kadencja 2016-2020

Prof. Peter Rehling – Przewodniczący Rady Naukowej CeNT UW
Katedra Biochemii Komórkowej, Uniwersyteckie Centrum Medyczne w Getyndze, Niemcy

Prof. Witold Filipowicz – Zastępca Przewodniczącego Rady Naukowej CeNT UW
Instytut Badań Biomedycznych im. Friedricha Mieschera, Szwajcaria

Prof. Ehud Gazit
Wydział Nauk Przyrodniczych im. George S. Wise, Uniwersytet w Tel Awiwie, Izrael

Prof. dr hab. inż. Leon Gradoń
Wydział Inżynierii Chemicznej i Procesowej Politechniki Warszawskiej, Polska

Prof. Reinhard Lührmann
Instytut Chemii Biofizycznej Maxa Plancka, Niemcy

Prof. Fatima Mechta-Grigoriou
Instytut Curie w Paryżu, Francja

Prof. Silvio Rizzoli
Katedra Fizjologii Neurologicznej i Czuciowej, Uniwersyteckie Centrum Medyczne w Getyndze, Niemcy

Dr Maciej Wieczorek
Celon Pharma S.A., Polska

Prof. Michele Vendruscolo
Katedra Chemii, Uniwersytet w Cambridge, Wielka Brytania

Prof. Magdalena Żernicka-Goetz
Katedra Fizjologii, Rozwoju i Neurologii, Uniwersytet w Cambridge, Wielka Brytania

 

Działania Rady CeNT UW/ Międzynarodowego Komitetu Naukowego ReMedy kadencji 2016-2020

27.09.2017 Powołanie Rady Centrum Nowych Technologii Uniwersytetu Warszawskiego na kadencję 2016-2020 przez Rektora UW
11.12.2017 Powołanie Międzynarodowego Komitetu Naukowego ReMedy na kadencję 2016-2020 przez Rektora UW
03.01.2018 Wybór Przewodniczącego Rady CeNT UW/ReMedy– Prof. Peter Rehling
31.01.2018 Akceptacja wymagań rekrutacyjnych w konkursie na Kierowników laboratoriów naukowych w ramach ReMedy
07.04.2018 Upoważnienie Dyrektora ReMedy do przeprowadzania procesów rekrutacji na stanowiska inne niż Kierownicy laboratoriów naukowych
14.06.2018 Zatwierdzenie „Regulaminu ewaluacji Kierowników laboratoriów naukowych w CeNT UW”
14.06.2018 Zatwierdzenie regulaminu konkursu na stanowiska Kierowników laboratoriów naukowych w ramach ReMedy
22.06.2018 Wybór Wiceprzewodniczącego Rady CeNT UW/ReMedy– Prof. Witold Filipowicz
24.07.2018 Zatwierdzenie nowego „Regulaminu Centrum Nowych Technologii Uniwersytetu Warszawskiego”
04-05.09.2018 Posiedzenie Rady CeNT UW/ReMedy – przyjęte uchwały:

Uchwały Rady CeNT UW

Uchwała nr 1/09/2018

Uchwała nr 2/09/2018

Uchwała nr 3/09/2018

Uchwała nr 4/09/2018

Uchwała nr 5/09/2018

Uchwały Rady ReMedy

Uchwała nr 1/09/2018

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Protokoły z posiedzeń Rady CeNT UW/ Międzynarodowego Komitetu Naukowego ReMedy:

04-05.09.2018

 

Procedura rekrutacji na stanowisko Kierowników Laboratoriów Naukowych w dziedzinie chemii i biologii obliczeniowej 2018.

Procedura rekrutacji na stanowisko Kierowników Laboratoriów Naukowych w projekcie ReMedy 2018.

Procedura otrzymania rekomendacji awansu na stanowisko profesora nadzwyczajnego UW 2018.

 

Rada Naukowa CeNT – Kadencja 2012-2016

Prof. dr hab. Ewa Bulska
Wydział Chemii UW

Prof. dr hab. Katarzyna Chałasińska – Macukow – Przewodnicząca Rady Naukowej
Wydział Fizyki UW

Prof. dr hab. Piotr Girdwoyń
Wydział Prawa i Administracji UW

Prof. dr hab. Beata Glinka
Wydzial Zarządzania UW

Prof. dr hab. Elżbieta Jagusztyn – Krynicka
Wydział Biologii UW

Prof. dr hab. Wiktor Koźmiński
Wydział Chemii UW

Prof. dr hab. Kazimierz Lewartowski
Wydział Historyczny UW

Dyrektor
Prof. dr hab. Agnieszka Chacińska
Zastępca Dyrektora ds. organizacji badań
dr Iwona Cymerman
Koordynator ds. infrastruktury
dr Rafał Wierzchosławski
Kierownik Działu Projektów
dr Lidia Tańska
Pełnomocnik Kwestora
mgr Artur Zieliński

 

Ogólny schemat struktury organizacyjnej jednostki

 

 

Szczegółowy schemat struktury organizacyjnej jednostki

 

Chromatography

  • High-performance liquid chromatographs with:
    • ultraviolet-visible absorption (UV/VIS) detector
    • fluorescence detector
    • with both diode array  (DAD) and fluorescence (FLD) detectors
  • High-performance liquid chromatographs with chiral columns set
  • Fast protein liquid chromatograph
  • Ion exchange chromatography and evaporation set

Microscopes

  • Inverted Routine Microscopes including Microscopes with cameras (OPTA-TECH MW50, Eclipse TS 100-F)
  • Fluorescence upright microscope with digital image analysis (Eclipse Ni-U)
  • Confocal (laser scanning) microscope (Axio Imager.Z2 Zeiss)
  • Confocal laser scanning microscope  for fluorescence lifetime measurement (MicroTime 200, PicoQuant GmBH)

 Spectroscopy

  • Spectrofluorometers
    • universal (e.g. Cary Eclipse BioMelt Agilent Technologies)
    • high-Performance Fluorescence Lifetime Spectrometer (Fluotime 300 easy tau, PicoQuant)
    • with single photon detector (Edinburgh Instruments FS-5)
    • with sample temperature control 15-35 °C (F7000, Hitachi)
  • Stopped-Flow Spectrometer System for absorbance and fluorescence measurements (BioLogic ALX250)
  • Ultraviolet-visible spectrometers
    • universal
    • the picodrop microliter type
  • Luminometer Glomax 20/20
  • Liquid chromatography – mass spectrometry analytical devices (Qtrap 3200 ABSCIEX)
  • Nuclear Magnetic Resonance (NMR) spectrometer
    • 700 MHz (VARIAN)
    • benchtop NMR spectrometer (MAGRITEK)
  • Raman Spectrometer
  • IR Spectrometer
  • The SuperK EXTREME supercontinuum white light laser 460-2400 nm (NKP Photonics EXW-12 with multi-line tunable filter NKT SELECT nIR1/VIS1x)
  • Optical test equipment consisting of: HeNe laser, Compact Spectrometer, Extended Range: 200 – 1000 nm, High-Sensitivity USB 3.0 CMOS Camera, spectrographs with spectral resolutions 2cm-1, xenon light source (HNL050R, CSS200/M, DCC3240C, Thorlabs; Andor Shamrock 750, LSM 320)

Next-Gen Sequencing

  • NGS libraries preparation
    • system for automatic reaction preparation (Freedom EVO 150/8; Tecan)
    • system for preparing high-quality NGS libraries NeoPrep (Illumina)
    • quality control Automated System which covers the full spectrum of DNA, gDNA and RNA (Fragment Analyzer; Advanced Analytical)
    • an automated system that creates clonal clusters from single molecule DNA templates (cBot, Illumina)
    • electrophoresis system that separates DNA or protein samples by size, and then fractionates the whole sample, or section of the sample, into fractions (SageELF)
    • DNA size selection for Next-Generation Sequencing (100bp-1.5kb) (PippinPrep)
  • Next-Gen Sequencing Instruments
    • high-throughput sequencing system (HiSeq4000, Illumina)
    • average-throughput sequencing system (HiSeq2500, Illumina)
    • low-throughput sequencing system (MiSeq, Illumina)
  • Single-cell sequencing system (C1, Access Array AX+FC1,  Fluidigm)

PCR

  •  Thermal cyclers (C1000Touch, BioRad)
  •  Real-time PCR amplification and detection instrument (LightCycler 480, Roche)

Labelled materials study

  • Isotopic Laboratory adopt to work with 32P and 35S
  • Sensitive and robust imager for chemiluminescence, UV and white light transillumination, and multi-fluorescence analysis of protein and DNA samples in gels and membranes (Amersham Imager 600 RGB, GE Healthcare)
  • Gell and Blot Imaging Systems – laser scanner precisely quantitates proteins, nucleic acids, and other biomolecules labelled with multiple visible and infrared fluorescent dyes, radioisotopes, and stained with dyes (Typhoon FLA 9500, GE Healthcare)

IT infrastructure

  • Computer clusters
    • general purpose (648 cores, 1.728 GB RAM, 3.3 GHz ) with GPU units
    • dedicated to genomics studies composed of
      • storage system (>2.5 PB)
      • analysis system (750 TFLOPS) composed including massive-parallel and big memory (6 TB) machines
      • many bioinformatics, molecular modelling, and structural biology software

Cell lines investigations

  • Cell Laboratory adapter to conduct experiments with GMO (I category.), GMM (I and II category)
  • CO2 Incubator
  • Laminar flow cabinets
  • Cell Analyzer (LSR Fortessa)
  • Cell sorter (BD FACS Aria Fusion)
  • Electroporation system for transfecting every cell type (GENE PULSER X CELL BIORAD)

General biological equipment

  • Shakers
    • incubator shaker (Innova 42, 44, New Brunswick)
    • incubator shaker with refrigeration (Innova 42R, 44R, New Brunswick)
  • Centrifuges
    • laboratory Centrifuges
    • cooling Centrifuges
    • superspeed centrifuge (SORVALL LYNX 6000, Thermo Fisher Scientific)
    • cytocentrifuge (Cytospin 4, Thermo Fisher Scientific)
    • ultracentrifuge (WX100 Thermo Scientific)
  • Hybridization oven
  • Sample concentrators (miVAC)
  • Dryers (Labconco FreeZone)
  • Sonication devices with cooling (Bioruptor Plus UCD-300i)
  • Homogenizer (GentleMACS Dissociator, Miltenyi Biotec GmBH)
  • Gel documentation system (GelDoc XR+, BioRad)
  • Hybrid Multi-Mode Reader (Synergy H1MFDG Biotek)
  • Ultra-Low Temperature Freezers (hef u570 Eppendorf)
  • Cryostat (Leica CM1860)
  • Milli-Q Type 1 Ultrapure Water Systems
  • Animal House Equipment
  • System for euthanasia of laboratory animals

Scullery room equipment

  • Large Steam Sterilizer STERIVAP SP HPE 669-2ED with water purifying system
  • Steam Sterilizer for liquid (UNISTERI HP 559-2ED, BMP)
  • Universal Steam Sterilizer (3870 ELV-D, Tuttnauer)
  • Washing Machine with drying (Miele)

Electrochemistry

  • Spectrophotometry setup  with intensity control consisting of Electrochemical workstation, photoelectrochemical cell simulation module, a light source with the integrated monochromator (Zennium, SIMPECC,CIMPS-pcs2; ZAHNER-electric GmBH)
  • Set for photoelectrochemiacal investigation – Solar symulator class IEC (LOT Quantum Design)
  • Photoelectric spectrometer for quantum efficiency measurement (Instytut Fotonowy)
  • Scanning Probe Microscope SECM-063
  • Set for photoelectrochemical absorbance/transmittance „in situ” investigation consisting of a Solar simulator class ABA (LS0308, ZAHNER-electric GmBH), 250-900 nm photoelectrochemical cel, chemical absorbance / transmittance systems (BLX-CXR-SR, Stellarnet Inc.)

Surface analysis equipment

  • Raman Spectrometer (LabRAM HR Evolution) connected with Atomic Force Microscope (TRIOS Platform, HORIBA Scientific)
  • Surface Plasmon Resonance Spectrometer (RT-08, LOT Quantum Design)
  • Electron Spectrometr for surface analysis  X-ray photoelectron spectrometr
  • Nanospectroscopy microscope (neaSNOM with nano-FTIR module; neaspec GmBH)
  • IR Spectrometr conjugated with a microscope (Nicolet is50, Nioclet Continuum, Thermo Scientific)

Physicochemical Properties Analysis Devices

  • Simultaneous Thermal Analyzer connected with quadrupole mass analyzer (STA-QMS)
  • Titration calorimetry set (Nano OTC TA)
  • Microscale Thermophoresis instrument  for studying biomolecular interactions in solution
  • Physical Property Measurement System – an open architecture, variable temperature-field system, designed to perform a variety of automated measurements
  • Magnetometer used to measure extremely subtle magnetic fields

General physical and chemical equipment

  • Glove-Boxes Workstation (MBRAUN  LAB master dp, UNILABPLUS ECO)
  • Four mirror optical floating zone furnace (FZ-T-12000-X-VII-VPO-PC)